Kaninchen anti-Maus CD5 monoklonaler Antikörper für Durchflusszytometrie - P13379

Kernproduktspezifikationen und -parameter

Biologischer Hintergrund: CD5-Funktion und -Lokalisierung

• CD5 ist ein lymphoidspezifischer Rezeptor, der von allen T-Zellen und einer Untermenge von B-Zellen, den sogenannten B1a-Zellen, exprimiert wird.
• Es spielt eine Rolle bei der Regulation von TCR- und BCR-Signalisierung, der Thymozytenselektion, der T-Zell-Effektordifferenzierung und der immunologischen Toleranz. Verwandte Referenzen: PMID:35720357
• CD5 interagiert mit Liganden auf B-Zellen wie CD5L oder CD72 und trägt zur kontaktvermittelten, T-abhängigen B-Zell-Aktivierung und Aufrechterhaltung der Homöostase regulatorischer T- und B-Zellen bei. Verwandte Referenzen: PMID:24950378, PMID:9064341, PMID:9723705
• Es fungiert als negativer Regulator der TCR-Signalisierung während der Thymozytenentwicklung durch Assoziation mit Signalproteinen einschließlich LCK, CD3Z-Kette, PI3K oder CBL. Verwandte Referenzen: PMID:11157848
• Mechanistisch führt die gleichzeitige Einbindung (Co-Engagement) von CD3 mit CD5 zu einer verstärkten Rekrutierung von phosphoryliertem CBL, was zu einer erhöhten VAV1-Phosphorylierung und -Degradation führt.
• CD5 moduliert die B-Zell-Biologie durch ERK1/2-Aktivierung in einem Ca(2+)-abhängigen Weg über den nicht-selektiven Ca(2+)-Kanal TRPC1, was zur IL-10-Produktion führt.
• CD5 befindet sich auf der Zellmembran und besitzt wichtige strukturelle Merkmale, darunter eine Disulfidbrücke, Glykosylierung und Phosphorylierungsstellen; es wirkt als Rezeptor mit signalübertragenden und transmembranen Domänen.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Dieser Antikörper ist direkt an konjugiert, was eine Einstufen-Färbung für die Durchflusszytometrie ohne Sekundärantikörper ermöglicht. Verwenden Sie geeignete Laseranregung (z. B. 650 nm) und Emissionsfilter (660/20 nm oder äquivalent).
• Validieren Sie den Antikörper in Ihrem experimentellen System unter Verwendung relevanter Mauszelllinien oder primärer Zellen, wie z. B. Milzzellen oder Lymphknoten-Lymphozyten, die T-Zellen und B1a-Zellen enthalten.
• Führen Sie eine Fc-Rezeptor-Blockade durch, wenn unspezifische Bindungen beobachtet werden, insbesondere bei der Arbeit mit myeloidreichen Proben.
• Titrieren Sie den Antikörper, um die optimale Konzentration für Ihre spezifischen Assay-Bedingungen zu ermitteln, und balancieren Sie dabei das Signal-Rausch-Verhältnis aus und minimieren Sie den Hintergrund.
• Erwägen Sie die inclusion geeigneter Isotyp-Kontrollen und Einfarbkompensationskontrollen für multicolor Durchflusszytometrie-Panels.

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