Kaninchen anti-Maus CD24 monoklonaler Antikörper für Durchflusszytometrie - P24807

Kernproduktspezifikationen und -parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisierung des Signaltransduktors CD24

• CD24, auch bekannt als HSA, Ly-52 oder Nectadrin, ist ein stark glycosyliertes, GPI-verankertes Zelloberflächenprotein, das in lymphoiden, myeloischen und erythroiden Zellen exprimiert wird.
• Es spielt eine zentrale Rolle bei der Zelldifferenzierung verschiedener Zelltypen und ist besonders wichtig für die frühe Thymozytenentwicklung.
• Es wird angenommen, dass die Signalübertragung über CD24 durch die Bindung lektinähnlicher Liganden an ihre Kohlenhydrate ausgelöst und über von dem GPI-Anker freigesetzte second messenger vermittelt wird.
• CD24 moduliert B-Zell-Aktivierungsantworten (Durch Ähnlichkeit).
• In Assoziation mit SIGLEC10 nimmt CD24 an der selektiven Unterdrückung von Immunreaktionen auf gefahrenassoziierte Molekülmuster (DAMPs) wie HMGB1, HSP70 und HSP90 teil. Verwandte Referenzen: PMID:19264983
• Das Protein spielt auch eine Rolle bei der Kontrolle von Autoimmunität. Verwandte Referenzen: PMID:20200274
• CD24 ist ausschließlich an der Zellmembran lokalisiert.
• UniProt-Schlüsselwörter umfassen: Zellmembran, direkte Proteinsequenzierung, Glykoprotein, GPI-Anker, Immunität, angeborene Immunität, Lipoprotein, Membran, Referenzproteom, Signal.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Dieser Antikörper ist direkt mit konjugiert, einem mit violettlicht anregbaren Fluorochrom. Er wird für Anwendungen der Durchflusszytometrie unter Verwendung geeigneter Filtersätze empfohlen (z. B. Anregung bei 405 nm mit Emission bei 450/50 nm).
• Titrieren Sie den Antikörper, um die optimale Färbekonzentration für Ihr spezifisches experimentelles System zu bestimmen.
• Verwenden Sie Isotyp-Kontrollantikörper (z. B. Kaninchen-IgG, konjugiert mit ), um die Hintergrundfärbung zu beurteilen.
• Schützen Sie während der Färbung und Lagerung vor Licht, um die Stabilität des Fluorochroms zu erhalten.
• Ordentliche Kompensationskontrollen (z. B. einfach gefärbte Zellen oder Beads) sind unerlässlich, wenn in Kombination mit anderen Fluorochromen gearbeitet wird.
• Validieren Sie Färbeprotokolle in Ihrem Zelltyp von Interesse, insbesondere wenn Sie mit seltenen Populationen oder niedriger Antigenexpression arbeiten.

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