Kaninchen-anti-human-CD235a/Glykophorin-A-mAb für FC - P02724

Zentrale Produktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisierung von Glykophorin A

• Glykophorin A (GYPA; Aliase MN-Sialoglykoprotein, PAS-2, CD235a) ist das wichtigste intrinsische Membranprotein menschlicher Erythrozyten und wird vom GYPA-Gen auf Chromosom 4 kodiert.
• Es ist ein zentraler Bestandteil des Ankyrin-1-Komplexes, der die Stabilität und Form der Erythrozytenmembran aufrechterhält. Eine Störung dieses Komplexes kann zu hereditärer Sphärozytose oder Elliptozytose führen.
  Verwandte Referenzen:
  PMID:35835865
• Die extrazelluläre N-terminale Domäne trägt sialylierte O-verknüpfte Glykane, die das MN-Blutgruppensystem definieren; die M- und N-Antigene entstehen durch Aminosäurepolymorphismen an den Positionen 1 und 5.
• Glykophorin A erleichtert den Transport und die Funktion des Anionenaustauschers SLC4A1 (Band 3) mit hoher Aktivität zur Plasmamembran.
• (Mikrobielle Infektion) Es fungiert als Rezeptor für das Hepatitis-A-Virus (HAV) und für das erythrozytenbindende Antigen 175 (EBA-175) von Plasmodium falciparum, wobei die Bindung von Sialinsäureresten abhängt.
• Die subzelluläre Lokalisierung ist die Plasmamembran mit einer einzelnen Transmembranhelix; das Protein unterliegt alternativem Spleißen, Phosphorylierung und O-Glykosylierung.

Experimentelle Anleitung und technische Hinweise

• Das Immunogen umfasst die extrazelluläre N-terminale Region (AS 20–91), die die antigene MN-Stelle einschließt; daher erkennt der Antikörper wahrscheinlich ein Epitop in dieser Domäne. Verwenden Sie für Positivkontrollen Erythrozytenlysate oder aufgereinigtes Glykophorin A.
• Für die Durchflusszytometrie titrieren Sie den Antikörper, um die optimale Färbekonzentration zu bestimmen; fixieren und permeabilisieren Sie die Zellen nur, wenn der Zugang zu einem intrazellulären Epitop erforderlich ist (obwohl sich das Zielprotein extrazellulär befindet).
• Validieren Sie den Antikörper im geeigneten Probensystem (z. B. menschliches Vollblut oder mit Erythrozyten angereicherte Fraktionen) und schließen Sie eine Isotypkontrolle ein, um die unspezifische Bindung zu beurteilen.
• Wenn Sie die Invasion durch Malariaerreger oder die Anheftung von HAV untersuchen, führen Sie parallel funktionelle Blockierungsassays durch, um die Rezeptorinteraktion zu bestätigen.

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