PE Kaninchen anti-human CD235a/Glycophorin A monoklonaler Antikörper für FC - P02724

Kernproduktspezifikationen und -parameter

Biologischer Hintergrund: Glycophorin-A-Funktion und Lokalisierung

• Glycophorin-A (GYPA) ist das wichtigste intrinsische Membran-Sialoglykoprotein menschlicher Erythrozyten, kodiert durch das GYPA-Gen (auch bekannt als GPA, MNS). Alternatives Spleißen führt zu mehreren Isoformen, und das Protein ist stark glykosyliert und trägt die MN-Blutgruppendeterminanten in seiner extrazellulären N-terminalen Region.
• Glycophorin A ist eine Komponente des Ankyrin-1-Komplexes, der für die Stabilität und Form der Erythrozytenmembran entscheidend ist (PubMed:35835865). Verwandte Referenzen: PMID:35835865
• Es wird für die Hochaktivitätsfunktion des Anionenaustauschers SLC4A1 (Band 3) benötigt und fördert dessen Translokation zur Plasmamembran.
• Die extrazelluläre Domäne dient als Rezeptor für das Hepatitis-A-Virus (HAV) und für P. falciparum Erythrozyten-bindendes Antigen 175 (EBA-175); die Bindung von EBA-175 ist von den Sialinsäureresten der O-verknüpften Glykane abhängig.
• Die subzelluläre Lokalisierung ist ausschließlich an der Zellmembran, mit einer Single-Pass-Transmembrantopologie und einem kurzen cytoplasmatischen Schwanz.
• Posttranslationale Modifikationen umfassen umfangreiche O-verknüpfte Glykosylierung und Phosphorylierung; das reife Protein weist ein scheinbares Molekulargewicht von 13–16 kDa auf, trotz einer theoretischen Masse von ~16,4 kDa.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen (aa 20-91) zielt auf die extrazelluläre Domäne ab, was diesen PE-konjugierten Antikörper für den Nachweis von nativem CD235a auf der Zelloberfläche mittels Durchflusszytometrie ohne Permeabilisierung geeignet macht.
• Die direkte PE-Konjugation macht einen sekundären Antikörper überflüssig, reduziert den Hintergrund und vereinfacht Färbeprotokolle für mehrfarbige FC-Panels.
• Erwägen Sie, den Antikörper an erythrozytenreichen Proben (z.B. Vollblut, RBC-Lysate) oder CD235a-exprimierenden Zelllinien zu titrieren, um die optimale Arbeitsverdünnung zu bestimmen.
• Verwenden Sie geeignete Isotypenkontrollen und Kompensationskontrollen, um die Spezifität in Ihrem experimentellen System zu validieren und spektrale Überlappungen zu minimieren.

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