Orexin B Kaninchen monoklonaler Antikörper für WB, IHC, IF/ICC, ELISA - O43612

Kernproduktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von Orexin B/Hypocretin-2

• Das HCRT-Gen kodiert die Präpro-Orexin-Vorstufe, die proteolytisch prozessiert wird, um zwei reife Neuropeptide zu produzieren: Orexin-A (Hypocretin-1) und Orexin-B (Hypocretin-2).
• Orexin-B/Hypocretin-2 ist ein selektiver Agonist für den Orexin-Rezeptor HCRTR2/OX2R, während Orexin-A sowohl HCRTR1 als auch HCRTR2 mit hoher Affinität bindet.
• Orexin-Neurone projizieren weitläufig aus dem lateralen Hypothalamus, und die Peptide werden in zytoplasmatischen Vesikeln an synaptischen Endigungen gespeichert; subzellulär lokalisiert sich die Vorstufe im rauhen Endoplasmatischen Retikulum.
• Zentrale Orexin-Signalgebung reguliert Fressverhalten, Energiestoffwechsel und Schlaf-Wach-Zyklen; eine Dysfunktion ist mit Schlafstörungen wie Narkolepsie verbunden (UniProt-Schlüsselwort: Krankheitsvariante).
• Orexin-B moduliert die Sekretion des luteinisierenden Hormons der Hypophyse auf ovariell steroidabhängige Weise (nach Ähnlichkeit).
• Die Vorstufe durchläuft posttranslationale Modifikationen einschließlich Amidierung, Spaltung an gepaarten basischen Resten und Disulfidbrückenbildung, um bioaktive Peptide zu erzeugen.
• Wird reichlich im Subthalamuskern exprimiert; nicht nachweisbar in Herz, Plazenta, Lunge, Leber, Skelettmuskel, Niere und Bauchspeicheldrüse (Hypothalamus wurde in der referenzierten Studie nicht getestet).

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen ist ein rekombinantes Protein von menschlichem Orexin B/Hypocretin-2; die Antikörperspezifität sollte im jeweiligen Probensystem validiert werden.
• Für Western Blot beträgt das vorhergesagte Molekulargewicht der Vorstufe 13 kDa, aber reife Peptide sind kleiner; erwägen Sie die Optimierung der Nachweisbedingungen und die Einbeziehung geeigneter Kontrollen.
• Für IHC-P müssen Methoden zur Antigenrückgewinnung gegebenenfalls empirisch optimiert werden; positive Kontrollgewebe wie der Subthalamuskern werden empfohlen.
• Für IF/ICC können Kolokalisationsstudien mit synaptischen Markern zur Bestätigung der Lokalisation beitragen; Hintergrundfärbung sollte mit Isotypkontrollen bewertet werden.

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