Anti-Zink-α2-Glykoprotein (ZAG/AZGP1) Kaninchen monoklonaler Antikörper für WB, IHC-P, ELISA - P25311

Kernproduktspezifikationen und -parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von Zink-α2-Glykoprotein

• Zink-α2-Glykoprotein (ZAG), kodiert durch das AZGP1-Gen, ist ein sekretiertes Protein, auch bekannt als ZNGP1.
• Es stimuliert den Lipidabbau in Adipozyten und ist an dem ausgeprägten Fettverlust (Kachexie) beteiligt, der mit fortgeschrittenen Krebserkrankungen einhergeht.
• ZAG kann mehrfach ungesättigte Fettsäuren binden, was auf eine Rolle im Lipidtransport oder -stoffwechsel hindeutet.
• Das Protein ist in verschiedenen Körperflüssigkeiten wie Blutplasma, Samenplasma, Urin, Speichel und Schweiß zu finden und wird von Epithelzellen verschiedener Drüsen und der Leber sezerniert.
• Es handelt sich um ein sekretiertes Glykoprotein mit einem Signalpeptid, bestätigt durch Proteomik-Identifikation und direkte Proteinsequenzierung.
• Strukturelle Merkmale umfassen eine Disulfidbindung und eine Pyrrolidoncarbonsäure-Modifikation, charakteristisch für sekretierte Proteine.
• Der UniProt-Eintrag gibt ein Molekulargewicht von etwa 34 kDa an, konsistent mit einem Einzelketten-Glykoprotein.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen ist ein synthetisches Peptid, das den Aminosäuren 1-100 des humanen AZGP1 (P25311) entspricht. Diese Region umfasst das Signalpeptid und die N-terminale Domäne, was die Erkennung sowohl der Vorläufer- als auch der reifen sekretierten Formen ermöglichen kann.
• Für den Western Blot (WB) sollten Serum- oder Zellkulturüberstand-Proben verwendet werden; ein Band bei etwa 34 kDa unter reduzierenden oder nicht-reduzierenden Bedingungen ist zu erwarten.
• Für die Immunhistochemie (IHC-P) ist eine Färbung von sekretorischem Epithelgewebe (z.B. Leber, Speicheldrüsen) zu erwarten; die Optimierung der Antigen-Demaskierung kann das Signal verbessern.
• Für ELISA kann der Antikörper potenziell als Detektions- oder Capture-Reagenz zur Quantifizierung von löslichem ZAG in biologischen Flüssigkeiten verwendet werden; eine Validierung mit einem passenden Antikörperpaar wird empfohlen.
• Experimentelle Bedingungen wie Antikörperverdünnung, Inkubationszeit und Blockierpuffer sollten im jeweiligen Probensystem optimiert werden.

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