Anti-WWC2 Kaninchen-Polyklonale Antikörper für WB, IHC-P, ELISA - Q6AWC2

Kernproduktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von WWC2

• Das Protein WWC2, auch bekannt als BH-3-only Mitglied B oder WW-Domänen enthaltendes Protein 2, wird beim Menschen durch das WWC2-Gen (früher BOMB) kodiert. Es ist ein Mitglied der Familie der WW-Domänen enthaltenden Proteine, gekennzeichnet durch Coiled-Coil-Regionen und mehrere WW-Domänen.
• Es fungiert als zentraler Regulator des Hippo-Signalwegs (Salvador-Warts-Hippo-Signalweg). WWC2 verstärkt die Phosphorylierung der großen Tumorsuppressorkinase 1 (LATS1) und des Yes-assoziierten Proteins 1 (YAP1), was zu einer unterdrückten transkriptionellen Aktivität von YAP1 und einer negativen Regulation der Zellproliferation und des Organwachstums führt.
• Subzellulär ist WWC2 überwiegend im Zytoplasma und Zytosol lokalisiert, was mit seiner Rolle in zytoplasmatischen Signalkaskaden übereinstimmt.
• Das Protein ist als Phosphoprotein annotiert, und seine Aktivität wird wahrscheinlich durch Phosphorylierungsereignisse moduliert. Alternatives Spleißen erzeugt mehrere Isoformen, was zu funktioneller Vielfalt führt.
• Als Transkriptionsrepressor hemmt WWC2 den onkogenen Koaktivator YAP1 und hemmt dadurch die Zellproliferation. Dies macht es zu einem potenziellen tumorsuppressiven Faktor im Hippo-Signalweg.
• Das Immunogen des Antikörpers, das die Reste 160–430 umfasst, enthält Regionen, die für Protein-Protein-Wechselwirkungen essenziell sind, wodurch es für den Nachweis von endogenem WWC2 in komplexen Proben geeignet ist.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen wurde als rekombinantes Fragment (AS 160–430) von humanem WWC2 konzipiert; beachten Sie, dass dieser polyklonale Antikörper aufgrund konservierter Epitope möglicherweise mehrere Isoformen und Orthologe erkennt.
• Beachten Sie bei Western Blot das vorausgesagte Molekulargewicht von ~134 kDa; verwenden Sie geeignete Gelprozente, Transferbedingungen und verlängerte Blockierung, um Hintergrund zu minimieren. Validieren Sie mit positiven und negativen Kontrolllysaten aus menschlichen, murinen oder Rattenzellen.
• Bei der Immunhistochemie (paraffineingebettete Schnitte) ist die Antigen-Demaskierung (z. B. Citratpuffer, hitzemittelt) entscheidend. Titrieren Sie den Antikörper und schließen Sie Isotypkontrollen ein, um die Spezifität in Gewebearrays zu bestätigen.
• Die berichtete Kreuzreaktivität mit murinem und Ratten-WWC2 deutet auf hohe Sequenzkonservierung hin; überprüfen Sie dennoch den Nachweis in den relevanten Spezies durch Vergleich mit menschlichen Proben.
• Verwenden Sie für ELISA einen indirekten Aufbau mit beschichtetem rekombinantem Antigen oder Fangantikörper. Optimieren Sie die Beschichtungskonzentrationen und Nachweisreagenzien, um eine lineare Standardkurve zu erhalten.

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