Anti-TNFRSF11A Kaninchen-Polyklonaler Antikörper für WB, IHC-P, IF/ICC, ELISA - Q9Y6Q6

Kernprodukt-Spezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: TNFRSF11A-Funktion und -Lokalisierung

• TNFRSF11A (Tumor-Nekrose-Faktor-Rezeptor-Superfamilie-Mitglied 11A), auch bekannt als RANK, ODFR und CD265, ist ein Rezeptor, der an das Zytokin TNFSF11/RANKL/TRANCE/OPGL bindet.
• Er spielt eine wesentliche Rolle bei der RANKL-vermittelten Osteoklastogenese, einem Prozess, der für den Knochenumbau und die Immunregulation kritisch ist. Verwandte Referenzen: PMID:9878548
• Die Wechselwirkung mit dem Adapterprotein EEIG1 fördert die Osteoklastogenese durch Erleichterung der Transkription von NFATC1 und Aktivierung von PLCG2.
• Der Rezeptor ist an der Regulierung der Wechselwirkungen zwischen T-Zellen und dendritischen Zellen beteiligt, was ihn mit Knochen- und Immunsystemfunktionen verbindet.
• Intrazellulär lokalisiert sich TNFRSF11A an der Zellmembran und in Membran-Rafts, wo er nach Ligandenbindung Signalkomplexe bildet.
• Ubiquitär exprimiert, mit bemerkenswert hohen Spiegeln in Skelettmuskel, Thymus, Leber, Dickdarm, Dünndarm und Nebenniere.
• Posttranslationale Modifikationen umfassen Disulfidbrückenbildung, Glykosylierung und Phosphorylierung, die seine Signalfähigkeit regulieren.
• Mutationen in TNFRSF11A sind mit Knochenerkrankungen wie Osteopetrose und familiärer expansiver Osteolyse assoziiert, und das Protein ist an rezeptorvermittelter Signalübertragung, Metallbindung und alternatives Spleißen beteiligt.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen entspricht der C-terminalen intrazellulären Domäne (aa 466–616), daher wird erwartet, dass der Antikörper die Volllänge und möglicherweise einige trunkierte Isoformen erkennt; RANK ohne die extrazelluläre Ligandenbindedomäne kann koexistieren.
• Beim Western Blotting sollte ein spezifisches Band um 66 kDa (reifes Protein) beobachtet werden; aufgrund starker Glykosylierung kann die scheinbare molekulare Masse in einigen Zelltypen nach oben verschoben sein.
• Erwägen Sie die Verwendung von Osteoklasten-Vorläuferzelllinien (z. B. RAW264.7, behandelt mit RANKL) oder aktivierten dendritischen Zellen als positive Kontrollen für WB und IF/ICC.
• Bei IHC-P und IF/ICC sind membranöse und möglicherweise raft-assoziierte Färbemuster zu erwarten; eine Permeabilisierung kann für eine optimale Detektion erforderlich sein.
• Überprüfen Sie die Kreuzreaktivität mit Maus- und Rattenproben durch Sequenzalignment; die Zielregion zeigt eine hohe Konservierung, aber die tatsächliche Leistung sollte in Ihren spezifischen Probesystemen validiert werden.

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