Anti-SPAM1 Kaninchen monoklonaler Antikörper für WB, IHC-P, ELISA - P38567

Kernproduktspezifikationen und -parameter

Biologischer Hintergrund: SPAM1-Funktion und Lokalisierung

• SPAM1 (Spermien-Adhäsionsmolekül 1), auch als Hyaluronidase PH-20, Hyaluronoglucosaminidase PH-20 oder Spermienoberflächenprotein PH-20 bezeichnet, ist ein Glycosylphosphatidylinositol (GPI)-verankertes Membranglykoprotein.
• Es fungiert als Hyaluronidase, die Hyaluronsäure in der Matrix der Cumuluszellen um die Eizelle herum enzymatisch verdaut und so das Eindringen der Spermien während der Befruchtung erleichtert.
• SPAM1 ist entscheidend für die Spermien-Eizellen-Adhäsion und vermittelt den ersten Kontakt zwischen Spermium und dem Cumulus-Oozyten-Komplex.
• Als Mitglied der Hyaluronidase-Familie wird es als Glycosidase (Hydrolase) eingestuft, die auf den Abbau von Hyaluronsäure spezialisiert ist.
• Das Protein lokalisiert an der Spermienzellmembran und wird testisspezifisch exprimiert.
• Posttranslationale Modifikationen umfassen N‑gebundene Glykosylierung, Disulfidbindungsbildung und einen GPI‑Anker, der es an der Membran verankert.
• Alternatives Spleißen führt zu mehreren Isoformen, die möglicherweise sein funktionelles Repertoire erweitern.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen entspricht einer internen Sequenz (aa 61–223) von humanem SPAM1; daher erkennt der Antikörper voraussichtlich das vollständige SPAM1 und Isoformen, die diese Region enthalten.
• Für den Western Blot sollte aufgrund der gewebespezifischen Expression Human-Hoden-Lysat oder Spermienproteinextrakt als positive Kontrolle verwendet werden; das vorhergesagte Molekulargewicht beträgt ~58 kDa, obwohl Glykosylierung zu einer Verschiebung führen kann.
• Für die Immunhistochemie an Paraffin-eingebetteten Schnitten (IHC‑P) sollten die Antigen-Demaskierung optimiert und die Reaktivität in humanem Hodengewebe validiert werden.
• Für ELISA-Anwendungen sollten rekombinantes SPAM1-Protein oder Zelllysate, die das Ziel exprimieren, zur Beschichtung oder zum Nachweis verwendet werden.
• Die Kreuzreaktivität mit Ratte weist auf eine konservierte Epitopstruktur hin; die Eignung für Rattenproben sollte durch Sequenzabgleich und experimentelle Validierung bestätigt werden.

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