Kaninchen-polykonaler Anti-SLC25A19-Antikörper für WB, IF/ICC, ELISA - Q9HC21

Zentrale Produktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisierung von SLC25A19

• SLC25A19, auch bekannt als mitochondrialer Thiaminpyrophosphat-Carrier (MTPPT), ist ein Mitglied der mitochondrialen Transporterfamilie der Solute Carrier 25 (SLC25).
• Es vermittelt die Aufnahme von Thiamindiphosphat (Thiaminpyrophosphat) in die Mitochondrien und spielt eine entscheidende Rolle im zellulären Energiestoffwechsel.
• Das Protein fungiert als Antiporter; ob seine Aktivität jedoch durch das mitochondriale Membranpotenzial oder den elektrochemischen Protonengradienten beeinflusst wird, ist unklar.
• Die subzelluläre Lokalisierung befindet sich in der mitochondrialen Membran, was mit seiner Transportfunktion übereinstimmt.
• Gewebespezifität: In allen untersuchten Geweben mit Ausnahme der Plazenta breit exprimiert, mit den höchsten Konzentrationen in Kolon, Niere, Lunge, Hoden, Milz und Gehirn.
• Schlüsselwörter weisen darauf hin, dass alternatives Spleißen mehrere Isoformen hervorbringt und zu den posttranslationalen Modifikationen auch die Phosphorylierung gehört.
• Es enthält Transmembranhelices, die für die mitochondriale Carrier-Familie charakteristisch sind.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Beim Western Blot beträgt das vorhergesagte Molekulargewicht 36 kDa; mögliche Verschiebungen aufgrund posttranslationaler Modifikationen sollten berücksichtigt werden.
• Bei der Immunfluoreszenz/ICC sollte ein Permeabilisierungsschritt für den Zugang zu den Mitochondrien eingeschlossen und eine Ko-Färbung mit einem mitochondrialen Marker zur Bestätigung der Lokalisierung in Betracht gezogen werden.
• Da es sich um einen polyklonalen Antikörper handelt, der mehrere Epitope erkennt, sollte die Spezifität mithilfe eines siRNA-Knockdowns oder geeigneter Negativkontrollen im jeweiligen Probensystem überprüft werden.
• Die Kreuzreaktivität mit Maus ermöglicht den Einsatz in Studien mit murinen Modellen; die Leistung sollte im ausgewählten Gewebe- oder Zelltyp validiert werden.
• Für ELISA sollten die Konzentration des Beschichtungsantigens und die Nachweisbedingungen gemäß Standardprotokollen optimiert werden.

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