Anti-SLC25A12-polyklonaler Antikörper für WB, ELISA – O75746

Zentrale Produktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von SLC25A12

• Das durch das SLC25A12-Gen codierte Protein (auch als Aralar, Aralar1 oder AGC1 bezeichnet) gehört zur Familie der mitochondrialen Carrier (Solute-Carrier-Familie 25) und fungiert als elektrogener Aspartat-/Glutamat-Antiporter.
• SLC25A12 katalysiert den Ausstrom von Aspartat aus der mitochondrialen Matrix im Austausch gegen Glutamat und ein Proton. Dies ist ein wichtiger Schritt im Malat-Aspartat-Shuttle, der Reduktionsäquivalente über die innere Mitochondrienmembran transportiert. Zugehörige Referenzen: PMID:11566871 PMID:19641205 PMID:24515575
• Der Transporter vermittelt außerdem die Aufnahme von L-Cysteinsulfinat (3-Sulfin-L-alanin) im Austausch gegen L-Glutamat und ein Proton und kann L-Cysteinsulfinat ohne Protonentranslokation gegen Aspartat austauschen. Zugehörige Referenzen: PMID:11566871
• SLC25A12 weist keine nachweisbare Transportaktivität für L-Glutamin oder Gamma-Aminobuttersäure (GABA) auf, was auf eine Substratspezifität hinweist. Zugehörige Referenzen: PMID:38945283
• Das Protein befindet sich in der inneren Mitochondrienmembran, was mit seiner Rolle beim Transport von Metaboliten über diese Barriere übereinstimmt.
• Die gewebespezifische Expression ist im Herzen und in der Skelettmuskulatur am höchsten, mit niedrigeren Konzentrationen im Gehirn und in der Niere.
• Mutationen in SLC25A12 stehen mit Entwicklungs- und epileptischer Enzephalopathie (DEE39, EIEE39) in Zusammenhang und unterstreichen seine Bedeutung für den neuronalen Stoffwechsel.
• Zu den UniProt-Schlüsselwörtern gehören Calcium-Bindung, Acetylierung, alternatives Spleißen und Krankheitsvariante, was auf posttranslationale Modifikationen und klinische Relevanz hinweist.

Experimentelle Anleitung und technische Hinweise

• Für den Western Blot beträgt das vorhergesagte Molekulargewicht etwa 75 kDa. Erwägen Sie die Verwendung einer geeigneten Membran (z. B. PVDF) und optimieren Sie die Bedingungen für Blockierung und Detektion für diesen Größenbereich.
• Das Immunogen entspricht der N-terminalen Region (Aminosäuren 1–180). Validieren Sie die Antikörperspezifität in relevanten Probensystemen mithilfe geeigneter Kontrollen, wie beispielsweise siRNA-Knockdown- oder Knockout-Zelllinien.
• Bei ELISA-Anwendungen kann eine direkte Beschichtung mit dem rekombinanten oder nativen Antigen eingesetzt werden. Bewerten Sie bei Bedarf die Kreuzreaktivität mit Orthologen aus Maus und Ratte.
• Berücksichtigen Sie bei der Herstellung von Lysaten die mitochondriale Lokalisation des Zielproteins. Angereicherte mitochondriale Fraktionen können die Signaldetektion verbessern.

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