Anti-SLC18A3 Kaninchen-Polyklonaler Antikörper für IF-P, IHC-P, ELISA - Q16572

Kernproduktspezifikationen und -parameter

Biologischer Hintergrund: SLC18A3-Funktion und -Lokalisierung

• SLC18A3, auch bekannt als vesikulärer Acetylcholin-Transporter (VACHT), gehört zur Solute-Carrier-18-Familie und ist hauptsächlich für das Beladen von Acetylcholin in synaptische Vesikel verantwortlich.
• Er fungiert als elektrogener Antiporter, der einen cholinergen Neurotransmitter (Acetylcholin oder Cholin) gegen zwei intravesikuläre Protonen austauscht, wobei er den durch die Vakuolen-typische H+-ATPase erzeugten Protonengradienten nutzt. Verwandte Referenzen: PMID:20225888, PMID:8910293
• Der Transporter bestimmt die cholinerge vesikuläre Quantengröße, was die Differenzierung von Motoneuronen und das Innervationsmuster an sich entwickelnden neuromuskulären Verbindungen beeinflusst.
• Im cholinergen System des Vorderhirns reguliert SLC18A3 die synaptische Übertragung im Hippocampus und ist essentiell für die Bildung des räumlichen Gedächtnisses.
• Neben Acetylcholin und Cholin kann SLC18A3 auch Serotonin transportieren, was auf eine breitere Substratspezifität hindeutet.
• Subzellulär lokalisiert er sich an der Membran zytoplasmatischer synaptischer Vesikel, was seiner Rolle bei der Speicherung von Neurotransmittern entspricht.
• Die Gewebeexpression ist auf periphere und zentrale cholinerge Neuronen beschränkt, was es zu einem spezifischen Marker für cholinerge Systeme macht.
• Mutationen in SLC18A3 sind mit dem kongenitalen myasthenen Syndrom assoziiert, was seine klinische Bedeutung für die Neurotransmission unterstreicht.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen entspricht dem C-terminalen Bereich (Aminosäuren 473–532) von menschlichem SLC18A3; führen Sie einen Sequenzabgleich durch, um die Konservierung des Epitops zu überprüfen, wenn Sie andere Spezies wie Maus oder Ratte verwenden.
• Für die Immunfluoreszenz (IF-P) und die Immunhistochemie (IHC-P) kann eine optimale Detektion eine optimierte Fixierung und Antigen-Retrieval erfordern; validieren Sie dies mit positiven Kontrollgeweben (z. B. Hirnschnitte aus cholinergen Regionen).
• Der Antikörper reagiert mit Maus- und Ratten-Orthologen, was ihn für kreuzspezifische Studien geeignet macht, aber bestätigen Sie die Kreuzreaktivität in Ihrem spezifischen experimentellen System.
• In ELISA-Anwendungen sollten Sie diesen Antikörper mit geeigneten sekundären Detektionsreagenzien kombinieren und die Assay-Bedingungen für Ihren Zielanalyten validieren.

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