Anti-RGS10 Kaninchen-Polyklonaler Antikörper für WB und ELISA - O43665

Kernproduktspezifikationen und -parameter

Biologischer Hintergrund: RGS10-Funktion und -Lokalisierung

• RGS10 (Regulator of G-Protein-Signalisierung 10) wird durch das RGS10-Gen kodiert; alternatives Spleißen erzeugt mehrere Transkriptvarianten.
• Es fungiert als GTPase-aktivierendes Protein (GAP) für G-Protein-Alpha-Untereinheiten, beschleunigt die GTP-Hydrolyse und treibt sie in den inaktiven GDP-gebundenen Zustand, wodurch die GPCR-Signalisierung gehemmt wird. Es moduliert spezifisch die Signalgebung downstream des muskarinischen Acetylcholinrezeptors CHRM2 und beeinflusst die Aktivität von Kaliumkanälen. Seine Aktivität auf GNAZ wird durch Palmitoylierung des G-Proteins gehemmt (PubMed:10608901, PubMed:11443111, PubMed:18434541, PubMed:9353196). Verwandte Referenzen: PMID:10608901 PMID:11443111 PMID:18434541 PMID:9353196
• Die subzelluläre Lokalisierung umfasst das Zytoplasma, das Zytosol und den Zellkern.
• Posttranslationale Modifikationen umfassen Palmitoylierung und Phosphorylierung, und es ist als Lipoprotein annotiert.
• Das Protein dient als Signaltransduktionsinhibitor und ist mit einer GTPase-Aktivierung assoziiert; seine 3D-Struktur wurde aufgeklärt.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen umfasst den N-terminalen Bereich (aa 1-181) von humanem RGS10; erwägen Sie die Verwendung von Vollprotein-Kontrollen, um die Spezifität zu bestätigen.
• Für Western Blot (WB) werden reduzierte/denaturierte Bedingungen aufgrund des vorhergesagten Molekulargewichts von ~21 kDa empfohlen; validieren Sie in Lysaten der Zielspezies (Mensch, Maus, Ratte).
• In ELISA-Setups sollte die polyklonale Natur für Capture/Detektion berücksichtigt werden; die Paarung mit einem monoklonalen Antikörper kann die Spezifität erhöhen.
• Da es sich um einen kaninchen-polyklonalen Antikörper handelt, sollten geeignete anti-Kaninchen-Sekundärreagenzien verwendet werden; kreuzadsorbierte Sekundärantikörper werden empfohlen, um den Hintergrund zu minimieren.
• Bei der Testung neuer Probentypen sollten positive und negative Kontrollen eingeschlossen werden, um die Reaktivität zu bestätigen und unspezifische Bindungen auszuschließen.

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