Anti-OsRDR6/SHL2 polyklonaler Kaninchen-Antikörper für WB & ELISA - Q8LHH9

Kernspezifikationen und Parameter des Produkts

Biologischer Hintergrund: OsRDR6-Funktion und Lokalisierung

• OsRDR6, kodiert durch das SHL2-Gen, ist auch als SHOOTLESS2 bekannt. Es handelt sich um eine wahrscheinliche RNA-abhängige RNA-Polymerase in Reis (Oryza sativa subsp. japonica).
• Das Protein spielt eine zentrale Rolle im RNA-Silencing-Signalweg und erzeugt wahrscheinlich kleine interferierende RNAs (siRNAs), die ein sequenzspezifisches Gen-Silencing steuern.
• OsRDR6 ist essenziell für die Initiierung und Aufrechterhaltung des Sprossapikalmeristems (SAM) sowie für die Blattpolarisierung. Es fungiert über den trans-acting siRNA (ta-siRNA) Signalweg.
• Dieser ta-siRNA-Signalweg moduliert die Expression von Auxin-Response-Faktor-Genen, einschließlich ARF2, ARF3, ARF4, ARF14 und ARF15, und beeinflusst dadurch die Pflanzenentwicklung.
• Als Nukleotidyltransferase und RNA-abhängige RNA-Polymerase bindet OsRDR6 RNA und katalysiert die Synthese komplementärer RNA-Stränge, ein entscheidender Schritt bei der Verstärkung von Silencing-Signalen.
• Das Protein wird unter RNA-vermitteltem Gen-Silencing und Transferase-Aktivitäten klassifiziert, was seine enzymatische Funktion bei der posttranskriptionalen Genregulation widerspiegelt.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Das Immunogen deckt die Aminosäuren 963–1218 ab, eine C-terminale Region von OsRDR6. Für Western Blots sollten geeignete Reisgewebe- oder Zelllysate verwendet werden, die endogenes OsRDR6 exprimieren; beachten Sie das vorhergesagte Molekulargewicht von etwa 137 kDa.
• Für ELISA-Anwendungen kann der Antikörper zum Nachweis von rekombinantem oder nativem OsRDR6 verwendet werden; validieren Sie die optimalen Beschichtungs- und Nachweisbedingungen in Ihrem Assay-System.
• Kreuzreaktivität wurde für Oryza sativa berichtet; eine Kreuzreaktivität mit anderen Spezies wurde nicht getestet. Überprüfen Sie die Spezifität in allen Nicht-Reis-Versuchsmodellen.
• Verwenden Sie geeignete Positiv- und Negativkontrollen (z. B. shl2-Mutantengewebe oder RNAi-Knockdown-Linien), um die Bandenidentität im WB zu bestätigen.

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