Anti-OGG1-Kaninchen-polyklonaler Antikörper für WB und ELISA – O15527

Zentrale Produktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisierung von OGG1

• OGG1 kodiert ein N-Glykosylase-/DNA-Lyase-Enzym, auch bekannt als 8-Oxoguanin-DNA-Glykosylase, das eine zentrale Rolle im Weg der Basenexzisionsreparatur (BER) spielt.
• Die primäre Funktion von OGG1 besteht darin, 7,8-Dihydro-8-oxoguanin (8-oxoG), eine bedeutende oxidative DNA-Läsion, zu erkennen und herauszuschneiden und dadurch die Reparatur beschädigter DNA einzuleiten.
• OGG1 entfernt außerdem 2,6-Diamino-4-hydroxy-5-N-methylformamidopyrimidin-(FAPY)-Läsionen und besitzt eine β-Lyase-Aktivität, die das DNA-Rückgrat 3' zur abasischen Stelle spaltet.
• Das Protein ist in mehreren subzellulären Kompartimenten lokalisiert, einschließlich des Zellkerns (Nukleoplasma, nukleäre Speckles und Kernmatrix) und der Mitochondrien, was seine Rolle bei der Reparatur sowohl nukleärer als auch mitochondrialer DNA widerspiegelt.
• Die OGG1-Expression ist in menschlichen Geweben ubiquitär, was mit der essenziellen Bedeutung der Reparatur oxidativer DNA-Schäden in allen Zelltypen übereinstimmt.
• Alternatives Spleißen erzeugt mehrere Isoformen von OGG1, die sich möglicherweise in ihrer subzellulären Zielsteuerung oder enzymatischen Aktivität unterscheiden.
• Das Protein wird als multifunktionelles Enzym klassifiziert, dessen Aktivitäten Hydrolase-, Lyase- und Glykosidasefunktionen umfassen, wie durch die UniProt-Schlüsselwörter hervorgehoben wird.

Experimentelle Anleitung und technische Hinweise

• Das zur Herstellung dieses polyklonalen Kaninchenantikörpers verwendete Immunogen umfasst die Aminosäuren 1–345 des humanen OGG1 (rekombinantes Protein voller Länge), wodurch möglicherweise mehrere Isoformen erkannt werden können, sofern die Epitope konserviert sind.
• Bei Anwendungen im Western Blot liegt die erwartete Bande bei etwa 39 kDa; alternative Spleißvarianten oder posttranslationale Modifikationen können jedoch bei bestimmten Probentypen zusätzliche Banden hervorbringen.
• Bei ELISA-Assays sollte die Verwendung von rekombinantem OGG1-Protein oder von Zelllysaten, die das Zielprotein exprimieren, in Betracht gezogen werden. Die Spezifität sollte mit geeigneten Kontrollen (z. B. Blockierungspeptid oder Knockout-Proben) validiert werden.
• Bei der Arbeit mit Mausproben sollte die Reaktivität unter den jeweils spezifischen Bedingungen bestätigt werden, da über Kreuzreaktivität berichtet wurde, diese jedoch je nach Assay-Format und Probenvorbereitung variieren kann.
• Um den Hintergrund im Western Blot zu minimieren, sollten die Blockierungsbedingungen (z. B. 5 % fettfreie Milch oder BSA) und die Antikörperverdünnung entsprechend dem verwendeten Expressionssystem optimiert werden.

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