Anti-MHC-Klasse-II-(I-A/I-E)-monoklonaler Antikörper für die Durchflusszytometrie – P18468 / P06342 / Q3U060 / P14435

Zentrale Produktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von MHC-Klasse II (I-A/I-E)

• MHC-Klasse-II-Moleküle sind heterodimere Glykoproteine, die aus Alpha- und Beta-Ketten bestehen und extrazelluläre Peptide für CD4+-T-Zellen präsentieren. Die Isotypen I-A und I-E sind die klassischen MHC-II-Moleküle der Maus.
• Die I-A-Beta-Kette (kodiert durch H2-Ab1) und die I-E-Beta-Kette (kodiert durch H2-Eb1) sind hochpolymorphe Membranproteine, die Komplexe mit ihren jeweiligen Alpha-Ketten, I-A-Alpha und I-E-Alpha, bilden.
• Diese Moleküle sind für die adaptive Immunität von entscheidender Bedeutung, da sie die Antigenpräsentation für T-Helferzellen vermitteln und während der thymischen Selektion das T-Zell-Repertoire prägen.
• Subzelluläre Lokalisation: Vorwiegend auf der Plasmamembran professioneller antigenpräsentierender Zellen (dendritische Zellen, B-Zellen, Makrophagen) und thymischer Epithelzellen exprimiert.
• Zu den posttranslationalen Modifikationen gehören die Bildung von Disulfidbindungen, die N-Glykosylierung und die Ubiquitinierung, die den Transport und Umsatz von MHC II regulieren.
• Schlüsselwörter: 3D-Struktur, Adaptive Immunität, Disulfidbindung, Glykoprotein, Immunität, Membran, MHC II, Referenzproteom, Signal, Transmembran, Transmembranhelix, Ubl-Konjugation.

Experimentelle Hinweise und technische Tipps

• Titrieren Sie den Antikörper für die Durchflusszytometrie, um die optimale Färbekonzentration für Ihren spezifischen Zelltyp und Ihre experimentellen Bedingungen zu bestimmen.
• Schließen Sie eine geeignete Isotypkontrolle und einen Vitalitätsfarbstoff ein, um tote Zellen zu unterscheiden, die eine unspezifische Bindung aufweisen können.
• Validieren Sie die Leistung des Antikörpers in relevanten Mausstämmen; beachten Sie, dass einige allotypspezifische Variationen die Erkennung beeinflussen können.
• Führen Sie die Oberflächenfärbung an lebenden, nicht fixierten Zellen durch; falls eine Fixierung erforderlich ist, testen Sie eine mögliche Maskierung des Epitops.
• Verwenden Sie bei der Durchführung einer Mehrfarben-Durchflusszytometrie farbstoffangepasste Kompensationskontrollen.

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