Anti-LAMP1/CD107a monoklonaler Antikörper für Durchflusszytometrie - P11279

Kernproduktspezifikationen und -parameter

Biologischer Hintergrund: LAMP1-Funktion und -Lokalisierung

• LAMP1 (CD107a) ist ein stark glykosyliertes lysosomales Membranprotein mit einem Signalpeptid und Disulfidbrücken, das in alternativ gespleißten Isoformen vorkommt.
• Fungiert als kritischer Regulator der Lysosomenbiogenese, Autophagie und des Cholesterin-Homöostase durch Modulation des lysosomalen pH-Werts durch direkte Hemmung des Protonenkanals TMEM175 (PubMed:37390818). Verwandte Referenzen: PMID:37390818
• In NK-Zellen ist LAMP1 für die Zytotoxizität unerlässlich: Es erleichtert die Bewegung der zytotoxischen Granula und den Transport von Perforin zu den lytischen Granula und schützt NK-Zellen vor Degranulations-assoziierten Selbstschäden (PubMed:2022921, PubMed:23632890, PubMed:23847195). Verwandte Referenzen: PMID:2022921, PMID:23632890, PMID:23847195
• Präsentiert Kohlenhydratliganden an Selektine und vermittelt potenziell die Zelladhäsion (PubMed:7685349). Verwandte Referenzen: PMID:7685349
• Wirkt als zellulärer Rezeptor für das Lassa-Virus-Glykoprotein und fördert den Eintritt und die Fusion des Virus in weniger sauren Endosomen (PubMed:24970085, PubMed:25972533, PubMed:27605678, PubMed:29295909). Verwandte Referenzen: PMID:24970085, PMID:25972533, PMID:27605678, PMID:29295909
• Unterstützt die FURIN-vermittelte Spaltung des Mumps-Virus-Fusionsproteins F durch Interaktion mit sowohl FURIN als auch dem unverarbeiteten viralen Protein.
• Die subzelluläre Lokalisierung umfasst die Lysosomenmembran, die Membran späteter Endosomen, die Zellmembran und die Membran der zytolytischen Granula.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Dieser Antikörper ist für die intrazelluläre Durchflusszytometrie bestimmt; für den optimalen Nachweis von LAMP1 in lysosomalen Kompartimenten verwenden Sie Fixierungs- und Permeabilisierungspuffer, die für intrazelluläre Antigene geeignet sind.
• Da LAMP1 während der Degranulation an die Zelloberfläche translozieren kann (z. B. in aktivierten NK-Zellen), kann eine Oberflächenfärbung beobachtet werden; validieren Sie dies in Ihrem spezifischen experimentellen System.
• Wenn Sie andere Anwendungen wie Western Blot oder Immunfluoreszenz verwenden, wird dringend empfohlen, vorläufige Tests durchzuführen, da der Antikörper für diese Verwendungen nicht validiert wurde.
• Erwägen Sie die Verwendung von Isotypkontrollen und titrieren Sie die Antikörperkonzentration für das beste Signal-Rausch-Verhältnis in der Durchflusszytometrie.

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