Kaninchen-poliklonaler Antikörper gegen Humanes Neurogranin für Western Blot, ELISA – Q92686

Kernproduktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von Neurogranin

• Neurogranin (NRGN), auch bekannt als RC3, ist ein postsynaptisches Protein, das als "Dritter Bote"-Substrat für durch Proteinkinase C (PKC) vermittelte molekulare Kaskaden während der synaptischen Entwicklung und Umgestaltung wirkt.
• Es bindet Calmodulin in Abwesenheit von Kalzium und reguliert dadurch die Verfügbarkeit von Calmodulin sowie nachgeschaltete Kalzium/Calmodulin-abhängige Signalwege.
• Im menschlichen Gehirn wird Neurogranin überwiegend in der Großhirnrinde exprimiert, insbesondere in den Zellkörpern von Neuronen der Schichten II-VI sowie in apikalen und basalen Dendriten pyramidaler Neuronen.
• Bemerkenswerterweise fehlt Neurogranin in Dendriten von Patienten mit Alzheimer-Krankheit, was es mit neurodegenerativen Pathologien verbindet.
• Das Protein erfährt mehrere posttranslationale Modifikationen, darunter Phosphorylierung, Acetylierung, Citrullinierung und Methylierung, die seine Funktion und die Calmodulin-Bindungsaffinität modulieren können.
• Als kleines Calmodulin-bindendes Protein (ca. 8 kDa) ist Neurogranin ein zentraler Regulator der synaptischen Signalübertragung und wird an Lern- und Gedächtnisprozessen beteiligt.

Experimentelle Anleitung und Technische Tipps

• Das Immunogen (Aminosäuren 2-78 von humanem Neurogranin, NP_001119653.1) deckt fast das gesamte reife Protein ab; es wird vorausgesagt, dass der Antikörper vollständiges Neurogranin erkennt.
• Für Western Blot hat Neurogranin ein vorausgesagtes Molekulargewicht von etwa 8 kDa; erwägen Sie die Verwendung eines Gels mit hohem Prozentsatz und optimierte Transferbedingungen für niedermolekulare Proteine.
• Der Antikörper kreuzreagiert mit Maus und Ratte, was auf konservierte Epitope hindeutet; validieren Sie die Reaktivität im Kontext der jeweiligen Art und Gewebe.
• Als Phosphoprotein kann Dephosphorylierung die Antikörperbindung beeinflussen; die Verwendung von Phosphatase-Inhibitoren bei der Probenaufbereitung kann in Betracht gezogen werden.
• Für ELISA-Anwendungen kann eine Optimierung des Beschichtungsantigens und der Nachweisprotokolle erforderlich sein, um eine optimale Leistung zu erreichen.

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