Anti-humaner CD30 (TNFRSF8) monoklonaler Antikörper () für die Durchflusszytometrie – P28908

Wesentliche Produktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von CD30

• CD30, auch als TNFRSF8 oder Ki-1-Antigen bezeichnet, ist ein Mitglied der Tumornekrosefaktor-Rezeptor-Superfamilie und fungiert als Rezeptor für den Liganden TNFSF8/CD30L. Er spielt eine Rolle bei der Regulierung des Wachstums und der Transformation aktivierter Lymphoblasten und vermittelt die NF-kappa-B-abhängige Genexpression. Verwandte Referenzen: PMID:8391931
  PMID:8999898
• Das Protein ist ein einfach durchspannendes Typ-I-Membran-Glykoprotein, das überwiegend in der Zellmembran lokalisiert ist; es wurde auch im Zytoplasma nachgewiesen.
• CD30 wurde auf Proteinebene in alveolären Makrophagen nachgewiesen, was auf eine Rolle bei der Funktion von Immunzellen hindeutet.
• Alternative Initiierung und alternatives Spleißen erzeugen mehrere Isoformen mit Proteingewichten von ungefähr 14 kDa, 50 kDa und 63 kDa (Volllänge).
• Zu den posttranslationalen Modifikationen gehören Glykosylierung, Phosphorylierung und Disulfidbrückenbildung, die für die Rezeptorstabilität und Signalübertragung essenziell sind.
• Der Rezeptor ist an wichtigen zellulären Prozessen wie Proliferation, Differenzierung und Apoptose beteiligt, insbesondere in lymphoiden Zellen.

Hinweise zur Durchführung und technische Tipps

• Das Immunogen entspricht den Aminosäuren 19–379 des humanen CD30 und umfasst die extrazelluläre Domäne. Dadurch eignet sich dieser Antikörper zum Nachweis von CD30 auf der Zelloberfläche mittels Durchflusszytometrie (FC).
• Da es sich um einen direkt mit konjugierten Antikörper handelt, kann er ohne sekundäre Färbung verwendet werden. Titreren Sie den Antikörper jedoch, um die optimale Konzentration für Ihre Zielzellpopulation zu bestimmen.
• Validieren Sie den Antikörper an humanen Zelllinien oder Primärproben, von denen bekannt ist, dass sie CD30 exprimieren (z. B. aktivierte T-Lymphozyten oder aus Hodgkin-Lymphomen stammende Zellen), und verwenden Sie geeignete Isotypkontrollen.
• Stellen Sie bei der Färbung der Zelloberfläche sicher, dass die Zellen vital sind, und verwenden Sie Blockierungsmittel, um eine unspezifische Bindung zu minimieren.

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