Anti-GSK3α Kaninchen polyklonaler Antikörper für WB, IF/ICC, ELISA – P49840

Kernproduktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von GSK3α

• GSK3A codiert Glykogen-Synthase-Kinase-3 alpha (GSK-3α), eine konstitutiv aktive Serin/Threonin-Proteinkinase, die zur Familie der Glykogen-Synthase-Kinasen 3 gehört.
• Wirkt als wichtiger negativer Regulator der Glukosehomöostase und des Wnt-Signalwegs durch Phosphorylierung von Substraten wie Glykogensynthase (GYS1/2), β-Catenin, APC und AXIN1, wobei typischerweise eine vorbereitete Phosphorylierung erforderlich ist. Verwandte Referenzen: PMID:11749387, PMID:17478001, PMID:19366350
• Trägt zur insulinregulierten Glykogensynthese bei und vermittelt die Entwicklung von Insulinresistenz durch Regulierung der Aktivierung von Transkriptionsfaktoren. Verwandte Referenzen: PMID:10868943, PMID:17478001
• Im Wnt-Signalweg steuert er den Gehalt und die transkriptionelle Aktivität von nukleärem β-Catenin. Verwandte Referenzen: PMID:17229088
• Erleichtert die Prozessierung des Amyloid-Vorläuferproteins (APP) und trägt zur Bildung von Amyloid-Plaques bei der Alzheimer-Krankheit bei. Verwandte Referenzen: PMID:12761548
• Wirkt als Regulator der Autophagie durch Vermittlung der Phosphorylierung von KAT5/TIP60 unter Hungerkonditionen, was die Acetylierung von wichtigen Autophagie-Regulatoren wie ULK1 und RUBCNL fördert. Verwandte Referenzen: PMID:30704899
• Phosphoryliert die mTORC2-Komponente RICTOR an Thr-1695 und erleichtert dadurch die FBXW7-vermittelte Ubiquitinierung und anschließende Degradation. Verwandte Referenzen: PMID:25897075
• Beteiligt an Neurogenese, neuronaler Polarität und apoptotischer Signalgebung; reguliert durch posttranslationale Modifikationen wie Acetylierung und Phosphorylierung.

Experimentelle Anleitung und technische Tipps

• Dieser Antikörper wurde gegen ein rekombinantes Protein entsprechend der C-terminalen Region (AS 409–483) von humanem GSK3α erzeugt; es wird vorhergesagt, dass er das volllängige Protein (~51 kDa) bei WB-Anwendungen nachweist.
• Verwenden Sie für WB geeignete Ladekontrollen und validieren Sie die Zielbande in Ihrem Probenystem; erwägen Sie Tests in einem Verdünnungsbereich, um das Signal-Rausch-Verhältnis zu optimieren.
• Bei IF/ICC können Fixierungs- und Permeabilisierungsbedingungen die Antigenzugänglichkeit beeinflussen; es wird empfohlen, einen Pilottest durchzuführen, um die optimalen Bedingungen zu ermitteln.
• Stellen Sie bei ELISA eine korrekte Antigenbeschichtung sicher und schließen Sie negative Kontrollen ein, um die Spezifität zu beurteilen.
• Kreuzreaktivität wurde mit Proben von Menschen und Mäusen bestätigt; bei Verwendung anderer Spezies ist aufgrund potenzieller Sequenzvariationen eine Validierung empfehlenswert.

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