Anti-ELP2-Kaninchen-polykolonaler Antikörper für WB, ELISA - Q6IA86

Zentrale Produktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisierung von ELP2

• ELP2 (Elongator-Komplex-Protein 2), auch bekannt als STAT3-interagierendes Protein 1 (StIP1) oder SHINC-2, ist eine wichtige Komponente des Elongator-Komplexes.
• Es ist für mehrere tRNA-Modifikationen, einschließlich mcm5U, mcm5s2U und ncm5U, essenziell, da es die Bildung von Carboxymethyluridin an der Wobble-Position 34 katalysiert. Verwandte Referenzen: PMID:29332244
• Der Elongator-Komplex reguliert die Transkriptionselongation und die Organisation des Zytoskeletts, wobei ELP2 hauptsächlich der tRNA-Prozessierung dient.
• ELP2 enthält WD-Wiederholungsdomänen, die Protein-Protein-Interaktionen vermitteln und für den Aufbau des aus mehreren Untereinheiten bestehenden Elongator-Komplexes entscheidend sind.
• Es ist sowohl im Zytoplasma als auch im Zellkern lokalisiert, was seine Funktionen bei der tRNA-Modifikation und möglicherweise bei der Transkription widerspiegelt.
• Mutationen im ELP2-Gen stehen mit autosomal-rezessiver geistiger Behinderung (MRT58) in Verbindung, was seine neurologische Bedeutung unterstreicht.
• Alternatives Spleißen führt zur Bildung mehrerer Isoformen und trägt zur funktionellen Vielfalt bei.
• ELP2 wurde durch umfassende Proteomik identifiziert und ist Bestandteil des menschlichen Referenzproteoms.

Experimentelle Anleitung und technische Hinweise

• Für den Western Blot sollten Sie eine Gesamtproteinlysatmenge von 20–50 µg auftragen und die Spezifität anhand von Knockdown- oder Knockout-Kontrollproben bestätigen.
• Bestätigen Sie die erwartete Bandengröße von etwa 93 kDa; aufgrund von Isoformen oder posttranslationalen Modifikationen können geringfügige Unterschiede bei der Migration auftreten.
• Titrieren Sie beim ELISA sowohl das Beschichtungsantigen als auch den Antikörper, um das Signal-Rausch-Verhältnis zu optimieren; schließen Sie Leerwert- und Negativkontrollvertiefungen ein.
• Polykolonale Antikörper weisen Schwankungen zwischen den Chargen auf; qualifizieren Sie jede Charge mit konsistenten Positiv- und Negativkontrollen.
• Führen Sie Blockierungs- und Inkubationsschritte mit Puffern durch, die empirisch für Ihre spezifische Matrix und Ihr Detektionssystem bestimmt wurden.
• Da eine Kreuzreaktivität mit Maus und Ratte besteht, überprüfen Sie bei Anwendungen außerhalb des Menschen die Sequenzhomologie zwischen den Arten.

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