Anti-DDAH2 Polyklonales Antikörper für WB, IHC-P, IF/ICC, ELISA - O95865

Kernproduktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisierung von DDAH2

• DDAH2 ist eine putative Hydrolase, die asymmetrisches Dimethylarginin (ADMA) – einen endogenen Inhibitor der Stickstoffmonoxid-Synthase – nicht hydrolysiert. Dies unterscheidet es von der aktiven DDAH1-Enzym. Verwandte Referenzen: PMID:21493890, PMID:37296100

• In Endothelzellen induziert DDAH2 die Expression des vaskulären endothelialen Wachstumsfaktors (VEGF) durch PKA-vermittelte Phosphorylierung des Transkriptionsfaktors SP1, unabhängig von Stickstoffmonoxid und NOS-Aktivität.

• DDAH2 verstärkt die pankreatische Insulinsekretion durch Hochregulierung von Sekretagogin/SCGN, einem Insulinvesikel-Docking-Protein, via SP1-vermittelter transkriptioneller Aktivierung.

• Nach einer viralen Infektion wandert DDAH2 zu den Mitochondrien, wo es die mitochondriale Spaltung durch Aktivierung von DNM1L fördert und die MAVS-vermittelte angeborene Immunantwort hemmt. Verwandte Referenzen: PMID:33850055

• Die subzelluläre Lokalisierung umfasst das Zytoplasma und die Mitochondrien, was mit seinen Rollen bei der Signaltransduktion und der mitochondrialen Dynamik übereinstimmt.

• DDAH2 wird in Geweben weit verbreitet exprimiert, mit den höchsten Gehalten in Herz, Plazenta, Lunge, Leber, Skelettmuskel, Niere und Pankreas, und sehr geringer Expression im Gehirn.

• Schlüsselwörter zu DDAH2 umfassen (vorhergesagte) Hydrolaseaktivität, mitochondriale und zytoplasmatische Lokalisierung sowie proteomische Identifizierung, was seine aufkommenden nicht-enzymatischen Funktionen widerspiegelt.

Experimentelle Anleitung und Technische Tipps

• Das Immunogen entspricht dem vollständigen humanen DDAH2-Protein (Reste 1–285), was eine potenzielle Detektion von endogenem DDAH2 über Spezies hinweg basierend auf den Kreuzreaktivitätsdaten (Mensch, Maus, Ratte) ermöglicht.
• Für Western Blot erwägen Sie die Verwendung von Positivkontroll-Lysaten aus Geweben mit hoher DDAH2-Expression (z. B. Herz oder Plazenta) und validieren Sie die Bandengröße bei etwa 30 kDa.
• In der Immunhistochemie (IHC-P) optimieren Sie die Antigen-Retrieval-Bedingungen und fügen Sie Isotypkontrollen hinzu, um unspezifische Färbung zu minimieren.
• Für Immunfluoreszenz (IF/ICC) müssen gegebenenfalls Fixierungs- und Permeabilisierungsprotokolle optimiert werden, um die Epitopzugänglichkeit und zelluläre Morphologie zu erhalten.
• ELISA-Anwendungen können für die quantitative Detektion verwendet werden; für Sandwich-ELISA wird die Paarung mit einem passenden Detektionsantikörper empfohlen.
• Validieren Sie den Antikörper immer im spezifischen experimentellen Kontext und Probensystem, da die Leistung je nach Versuchsbedingungen variieren kann.

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