Anti-AGMAT-Kaninchen-monoklonaler Antikörper für WB, IHC-P, IF/ICC, ELISA – Q9BSE5

Zentrale Produktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation von AGMAT

• AGMAT kodiert eine Guanidinosäure-Hydrolase, ein mitochondriales Enzym, das lineare Guanidinosäuren wie Taurocyamin, Guanidinopropansäure und Guanidinobuttersäure zu Harnstoff und den entsprechenden Aminen hydrolysiert.
• Das Enzym zeigt eine Substratspezifität für Guanidinoverbindungen mit einer negativ geladenen Kopfgruppe und kurzen Kohlenstoffketten; es metabolisiert L-Arginin mit geringer Effizienz.
• Durch den Abbau potenziell zytotoxischer Guanidinosäuren könnte AGMAT eine schützende Rolle in zellulären Entgiftungswegen spielen.
• Das Protein ist in den Mitochondrien lokalisiert, was mit seiner Rolle im Argininstoffwechsel und dem Vorhandensein eines N-terminalen Transitpeptids übereinstimmt, das den mitochondrialen Import steuert.
• AGMAT wird in der menschlichen Leber und Niere stark exprimiert und ist zusätzlich in der Skelettmuskulatur, der fetalen Leber, dem Gehirn, den Hoden, der Haut und dem Gastrointestinaltrakt vorhanden; innerhalb des Gehirns zeigen kortikale Regionen eine höhere Expression als Medulla oder Rückenmark.
• Es gehört zur Arginase-Familie und benötigt Mangan als Metallkofaktor für die katalytische Aktivität, wie durch seine Schlüsselwort-Annotationen angezeigt wird.
• Zu den posttranslationalen Modifikationen gehört die Acetylierung, und das Protein wurde in Proteomik-Studien als Bestandteil des Referenzproteoms identifiziert.

Experimentelle Hinweise und technische Tipps

• Das Immunogen umfasst das vollständige humane AGMAT-Protein (Reste 1–352); dieses Design kann eine breite Epitopabdeckung für Anwendungen wie WB, IHC-P, IF/ICC und ELISA bieten.
• Für WB sollte die Verwendung von Lysaten aus menschlichen, Maus- oder Rattengeweben in Betracht gezogen werden, von denen bekannt ist, dass sie AGMAT exprimieren (z. B. Leber oder Niere); erwarten Sie eine Bande bei etwa 38 kDa. Die Spezifität sollte mithilfe geeigneter Kontrollen validiert werden.
• Bei IHC-P sollten die Bedingungen für die Antigen-Rückgewinnung (z. B. Citratpuffer pH 6,0 oder Tris-EDTA pH 9,0) optimiert und die Färbung in Geweben mit dokumentierter AGMAT-Expression überprüft werden.
• Für IF/ICC deutet die mitochondriale Lokalisation auf die Verwendung einer MitoTracker-Kofärbung oder einer subzellulären Fraktionierung zur Bestätigung der Zielspezifität hin; Permeabilisierungs- und Blockierungsschritte müssen möglicherweise optimiert werden.
• Als kaninchen-monoklonaler Antikörper bietet dieses Reagenz eine hohe Chargenkonsistenz; dennoch werden Titrationsexperimente für jedes neue Assaysystem empfohlen.

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