ADORA2A Kaninchen pAb - P29274

Kernproduktspezifikationen und Parameter

Biologischer Hintergrund: Funktion und Lokalisation des Adenosin-Rezeptors A2a (ADORA2A)

• ADORA2A codiert den Adenosin-Rezeptor A2a, ein Mitglied der Familie der G-Protein-gekoppelten Rezeptoren (GPCR).
• Es fungiert als Rezeptor für Adenosin, seine Aktivität wird durch G-Proteine vermittelt, hauptsächlich Gs, die Adenylylcyclase aktivieren und den cAMP-Spiegel erhöhen.
• Es wird vorausgesagt, dass der Rezeptor sieben Transmembrandomänen enthält, charakteristisch für GPCRs, und eine Disulfidbindung sowie Glykosylierungsstellen besitzt.
• Subzellulär ist ADORA2A an der Zellmembran lokalisiert, was seiner Rolle bei der Signaltransduktion von extrazellulärem Adenosin entspricht.
• Das Protein unterliegt der Ubiquitinierung (Ubl-Konjugation), was eine Regulation durch proteasomalen Abbau nahelegt.
• Aufgrund seiner modulatorischen Funktionen wird ADORA2A intensiv im Zusammenhang mit neurodegenerativen Erkrankungen, kardiovaskulärer Funktion und Entzündungen erforscht.
• Alternative Bezeichnungen sind A2aR, RDC8 und ADORA2.
• Die rekombinante Immunogensequenz entspricht den Aminosäuren 300–400 des menschlichen Proteins (NP_000666.2), eine Region, die wahrscheinlich innerhalb der intrazellulären C-terminalen Domäne liegt.

Experimentelle Anleitung und technische Hinweise

• Das Immunogen ist ein synthetisches Peptid aus der intrazellulären C-terminus (aa300–400), was einen Antikörper ergeben kann, der für den Nachweis von gesamten ADORA2A-Proteinspiegeln in denaturierten Proben (WB) geeignet ist.
• Bei WB ist eine Bande bei etwa 45 kDa zu erwarten, obwohl posttranslationale Modifikationen zu Verschiebungen führen können.
• Aufgrund der Kreuzreaktivität mit Maus und Ratte ist er für Studien an diesen Spezies geeignet; dennoch wird eine Sequenzabgleichung der Immunogenregion empfohlen, um die Homologie zu bestätigen.
• Für IF/ICC sollten Fixierungs- und Permeabilisierungsbedingungen optimiert werden, da das Target ein Transmembranprotein ist; es wird empfohlen, sowohl Methanol- als auch Formaldehyd-Fixierung zu testen.
• Fügen Sie immer geeignete Kontrollen hinzu (z. B. Knockout-Zelllinien oder Peptid-Blocking), um die Spezifität in Ihrem experimentellen System zu bestätigen.

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